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酶底物法HJ1001-2018 标准下载

(点击下载)水质总大肠菌群、粪大肠菌群和
大肠埃希氏菌的测定酶底物法
Water quality—Determination of total coliforms, fecal coliforms and Escherichia coli—Enzyme substrate method
 
前言
为贯彻《中华人民共和国环境保护法》和《中华人民共和国水污染防治法》,保护生态环境,保障人体健康,规范水中总大肠菌群、粪大肠菌群和大肠埃希氏菌的测定方法,制定本标准。
本标准规定了测定地表水、地下水、生活污水和工业废水中总大肠菌群、粪大肠菌群和大肠埃希氏菌的酶底物法。
本标准的附录A为规范性附录,附录B和附录C为资料性附录。
本标准为首次发布。
本标准由生态环境部生态环境监测司、法规与标准司组织制订。
本标准起草单位:上海市环境监测中心。
本标准验证单位江苏省环境监测中心、浙江省环境监测中心、常州市环境监测中心、上海市松江区环境监测站、上海市长宁区环境监测站和上海市青浦区环境监测站。
本标准生态环境部2018年12月26日批准。
本标准自2019年6月1日起实施。
本标准由生态环境部解释。
 
水质总大肠菌群、粪大肠菌群和大肠埃希氏菌的测定酶底物法
1 适用范围
本标准规定了测定水中总大肠菌群、粪大肠菌群和大肠埃希氏菌的酶底物法。
本标准适用于地表水、地下水、生活污水和工业废水中总大肠菌群、粪大肠菌群和大肠埃希氏菌的测定。本方法的检出限为10 MPN/L。
2 规范性引用文件
本标准引用了下列文件或其中的条款。凡是不注日期的引用文件,其有效版本适用于本标准。
GB/T 6682 分析实验用水规格和实验方法
GB/T 14581 水质湖泊和水库采样技术指导
HJ 494 水质采样技术指导
HJ/T 91 地表水和污水监测技术规范
3 术语和定义
下列术语和定义适用于本标准。
3.1
总大肠菌群total coliforms
37℃培养24 h,能产生β-半乳糖苷酶(β-D-galactosidase),分解选择性培养基中的邻硝基苯-β-D-吡喃半乳糖苷(ONPG)生成黄色的邻硝基苯酚的肠杆菌科细菌。
3.2
粪大肠菌群fecal coliforms又称耐热大肠菌群(thermotolerant coliforms)。44.5℃培养24 h,能产生β-半乳糖苷酶(β-D-galactosidase),分解选择性培养基中的邻硝基苯-β-D-吡喃半乳糖苷(ONPG)生成黄色的邻硝基苯酚的肠杆菌科细菌。
3.3
大肠埃希氏菌Escherichia coli俗称大肠杆菌。37℃培养24 h,能产生β-半乳糖苷酶(β-D-galactosidase),分解选择性培养基中的邻硝基苯-β-D-吡喃半乳糖苷(ONPG)生成黄色的邻硝基苯酚,同时产生β-葡萄糖醛酸酶(β-Glucuronidase),分解选择性培养基中的4-甲基伞形酮-β-D-葡萄糖醛酸苷(MUG)释放出荧光物质(4-甲基伞形酮)的肠杆菌科细菌。
3.4
最大可能数most probable number(MPN)又称稀释培养计数,是一种基于泊松分布的间接计数法。利用统计学原理,根据一定体积不同稀释度样品经培养后产生的目标微生物阳性数,查表估算一定体积样品中目标微生物存在的数量(单位体积存在目标微生物的最大可能数)。
4 方法原理
在特定温度下培养特定的时间,总大肠菌群、粪大肠菌群、大肠埃希氏菌能产生β-半乳糖苷酶,将选择性培养基中的无色底物邻硝基苯-β-D-吡喃半乳糖苷(ONPG)分解为黄色的邻硝基苯酚(ONP);大肠埃希氏菌同时又能产生β-葡萄糖醛酸酶,将选择性培养基中的4-甲基伞形酮-β-D-葡萄糖醛酸苷(MUG)分解为4-甲基伞形酮,在紫外灯照射下产生荧光。统计阳性反应出现数量,查MPN 表,分别计算样品中总大肠菌群、粪大肠菌群、大肠埃希氏菌的浓度值。
5 干扰和消除
5.1 活性氯具有氧化性,能破坏微生物细胞内的酶活性,导致细胞死亡,可在样品采集(8.1)时加入硫代硫酸钠溶液(6.4)消除干扰。
5.2 重金属离子具有细胞毒性,能破坏微生物细胞内的酶活性,导致细胞死亡,可在样品采集(8.1)时加入乙二胺四乙酸二钠溶液(6.5)消除干扰。
6 试剂和材料
除非另有说明,分析时均使用符合国家标准的分析纯试剂,实验用水应满足GB/T 6682中三级水的要求。
6.1 培养基。
本标准采用Minimal Medium ONPG-MUG 培养基。每100 ml 样品需使用培养基粉末。
2.7 g±0.5 g,所含基本成分如下:
硫酸铵[(NH4)2SO4] 0.5 g
硫酸锰(MnSO4) 0.05 mg
硫酸锌(ZnSO4) 0.05 mg
硫酸镁(MgSO4) 10 mg
氯化钠(NaCl) 1 g
氯化钙(CaCl2) 5 mg
亚硫酸钠(Na2SO3) 4 mg
两性霉素B(Amphotericin B) 0.1 mg
邻硝基苯-β-D-吡喃半乳糖苷(ONPG) 50 mg
4-甲基伞形酮-β-D-葡萄糖醛酸苷(MUG) 7.5 mg
茄属植物萃取物(Solanium 萃取物) 50 mg
N-2-羟乙基哌嗪-N-2-乙磺酸钠盐(HEPES 钠盐) 0.53 g
N-2-羟乙基哌嗪-N-2-乙磺酸(HEPES) 0.69 g
也可采用市售商品化培养基制品。
6.2 硫代硫酸钠(Na2S2O3·5H2O)。
6.3 乙二胺四乙酸二钠(C10H14N2O8Na2·2H2O)。
6.4 硫代硫酸钠溶液:ρ(Na2S2O3)=0.10 g/ml。称取15.7 g 硫代硫酸钠(6.2),溶于适量水中,定容至100 ml,临用现配。
6.5 乙二胺四乙酸二钠溶液:ρ(C10H14N2O8Na2·2H2O)=0.15 g/ml。称取15 g 乙二胺四乙酸二钠(6.3),溶于适量水中,定容至100 ml,此溶液保质期为30 d。
6.6 97 孔定量盘:含49 个大孔,48 个小孔。其中,每个小孔可容纳0.186 ml 样品,大孔中48 个大孔每个可容纳1.86 ml 样品,一个顶部大孔可容纳11 ml 样品。也可采用经环氧乙烷灭菌的市售商品化成品。
6.7 标准阳性比色盘。
6.8 无菌水:取适量实验用水,经121℃高压蒸汽灭菌20 min,备用。
7 仪器和设备
7.1 采样瓶:具螺旋帽或磨口塞的100 ml、250 ml、500 ml 广口玻璃瓶。
注:在采集不存在或不考虑余氧、金属离子干扰的样品时,可采用市售无菌采样瓶或无菌采样袋。
7.2 高压蒸汽灭菌器:121℃可调。
7.3 恒温培养箱:允许温度偏差37℃±1℃、44.5℃±0.5℃。
7.4 程控定量封口机:用于97 孔定量盘(6.6)的封口。
7.5 紫外灯:365~366 nm。
7.6 移液管:1 ml±0.01 ml、10 ml±0.1 ml。也可采用计量合格的可调式移液器。
7.7 三角瓶:100 ml。
7.8 量筒:100 ml±1 ml。
7.9 一般实验室常用仪器和设备。
注:三角瓶、移液管、采样瓶等玻璃器皿及采样器具要在试验前按无菌操作要求包扎,121℃高压蒸
汽灭菌20 min,烘干,备用。
8 样品
8.1 样品采集
点位布设及采样频次按照GB/T 14581、HJ/T 494 和HJ/T 91 的相关规定执行。采集微生物样品时,采样瓶(7.1)不得用样品洗涤,采集样品于灭菌的采样瓶中。采集河流、湖库等地表水样品时,可握住瓶子下部直接将带塞采样瓶插入水中,约距水面10~15 cm 处,瓶口朝水流方向,拔瓶塞,使样品灌入瓶内然后盖上瓶塞,将采样瓶从水中取出。如果没有水流,可握住瓶子水平往前推。采样量一般为采样瓶容量的80%左右。样品采集完毕后,迅速扎上无菌包装纸。从龙头装置采集样品时,不要选用漏水龙头,采水前将龙头打开至最大,放水3~5 min,然后将龙头关闭,用火焰灼烧约3 min 灭菌或用70%~75%的酒精对龙头进行消毒,开足龙头,再放水1 min,以充分除去水管中的滞留杂质。采样时控制水流速度,小心接入瓶内。采集地表水、废水样品及一定深度的样品时,也可使用灭菌过的专用采样装置采样。在同一采样点进行分层采样时,应自上而下进行,以免不同层次的搅扰。如果采集的是含有活性氯的样品,需在采样瓶灭菌前加入硫代硫酸钠溶液(6.4),以除去活性氯对细菌的抑制作用(每125 ml 容积加入0.1 ml 的硫代硫酸钠溶液);如果采集的是重金属离子含量较高的样品,则在采样瓶灭菌前加入乙二胺四乙酸二钠溶液(6.5),以消除干扰(每125 ml 容积加入0.3 ml 的乙二胺四乙酸二钠溶液)。
注:15.7 mg 硫代硫酸钠(6.2)可去除样品中1.5 mg 活性氯,硫代硫酸钠用量可根据样品实际活性氯
量调整。
8.2 样品保存
采样后应在2 h 内检测,否则,应10℃以下冷藏但不得超过6 h。实验室接样后,不能立即开展检测的,将样品于4℃以下冷藏并在2 h 内检测。
9 分析步骤
9.1 样品稀释
根据样品污染程度确定接种量(见表1),避免接种样品培养后97 孔定量盘(6.6)出现全部阳性或全部阴性。接种量小于100 ml 时,应稀释样品后接种,接种量为10 ml 时,取10 ml 样品加入到盛有90 ml 无菌水(6.8)的三角瓶(7.7)中混匀制成1:10 的稀释样品,其他接种量的稀释样品依次类推。对于未知样品,可选用多个接种量进行检测。

9.2 接种
量取100 ml 样品或稀释样品于灭菌后的三角瓶,加入2.7 g±0.5 g 培养基(6.1)粉末,充分混匀,完全溶解后,全部倒入97 孔定量盘(6.6)内,以手抚平97 孔定量盘背面,赶除孔内气泡,然后用程控定量封口机(7.4封口。观察97 孔定量盘颜色,若出现类似或深于标准阳性比色盘(6.7)的颜色,则需排查样品、培养基、无菌水等一系列因素后,终止试验或重新操作
注:9.1、9.2 步骤在野外操作时应避开明显局部污染源,建议使用一次性手套、口罩、酒精灯等。
9.3 培养
测定总大肠菌群和大肠埃希氏菌时,将封口后的97 孔定量盘放入恒温培养箱(7.3)中37℃±1℃下培养24 h。测定粪大肠菌群时,将封口后的97 孔定量盘放入的恒温培养箱中44.5℃±0.5℃下培养24 h。
9.4 对照试验
9.4.1 空白对照
每次试验都要用无菌水(6.8)按照步骤9.1~9.3 进行实验室空白测定。培养后的97 孔定量盘不得有任何颜色反应,否则,该次样品测定结果无效,应查明原因后重新测定。
9.4.2 阴性和阳性对照
总大肠菌群、大肠埃希氏菌、粪大肠菌群的阴性、阳性菌株参考表2。
 
表2 阴性、阳性菌株参考表

检测指标 阳性菌种 阴性菌种
总大肠菌群 大肠埃希氏菌、
产气肠杆菌(Enterobacter aerogenes)
金黄色葡萄球菌(Staphylococcus aureus)、
假单胞菌属(Pseudomonas sp.)
大肠埃希氏
大肠埃希氏菌 金黄色葡萄球菌、
假单胞菌属
粪大肠菌群 大肠埃希氏菌(耐热型)、
克雷伯氏菌属(Klebsiella trevisan)
(耐热型)
产气肠杆菌、
粪链球菌(Streptococcus faecalis)、
假单胞菌属
 
将标准菌株制成300~3000 个/ml 的菌悬液,将菌悬液按接种(9.2)和培养(9.3)要求操作,阳性菌株应呈现阳性反应;阴性菌株呈现阴性反应,否则,该次样品测定结果无效,应重新测定。
注:可先制备较高浓度菌悬液,采用血球计数器在显微镜下对其浓度进行初步测定,然后根据实际情
况用无菌水(6.8)稀释至300~3000 个/ml。
9.4.3 结果判读与计数
将培养24 h 后的97 孔定量盘进行结果判读,样品变黄色判断为总大肠菌群或粪大肠菌群阳性;样品变黄色且在紫外灯(7.5)照射下有蓝色荧光,判断为大肠埃希氏菌阳性。如果结果可疑,可延长培养至28 h 进行结果判读,超过28 h 后出现的颜色反应不作为阳性结果。可使用保质期内的标准阳性比色盘以辅助判读,参见附录A。分别记录97 孔定量盘中大孔和小孔的阳性孔数量。